ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ТЕСТЕРА SPAD 502 PLUS ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ СОДЕРЖАНИЯ ХЛОРОФИЛЛЬНЫХ ПИГМЕНТОВ В ЛИСТЬЯХ ЯРОВОЙ ПШЕНИЦЫ

УДК: 633.111:631.527:581.132 DOI: 10.31588/2073-0462-2026-21-2-22-28 EDN: CSLONA

Авторы

  • Людмила Владиславовна Волкова Федеральный аграрный научный центр Северо-Востока имени Н. В. Рудницкого (610007, Российская Федерация, г. Киров, ул. Ленина, д. 166а) https://orcid.org/0000-0002-0837-8425

Ключевые слова:

яровая пшеница (Triticum aestivum), селекция, сорта, гибридные комбинации, пигменты, фотосинтез, корреляция

Аннотация

Исследования проводили с целью изучения возможностей использования прибора контактного действия Konica Minolta SPAD 502 Plus (Япония) для диагностики содержания фотосинтетических пигментов в листьях пшеницы и выделения материала для селекции. Работу выполняли в 2022–2023 годы в условиях Кировской области. Для проверки точности тестера одновременно выполняли анализ состава пигментного комплекса с использованием спектрофотометра UVmini-1240 (Япония). Объектом для изучения служили 8 родительских сортов и 36 гибридных комбинаций третьего-четвертого поколений в фазах цветения и молочно-восковой спелости. Показания тестера SPAD 502 Plus характеризуются высокой межсортовой изменчивостью (15,4…51,2 единиц прибора) со значимыми генотипическими различиями (НСР05=4,6…9,3). Проявление признака отличается высокой сортовой специфичностью по уровню снижения показателей от фазы цветения до молочно-восковой спелости (от -3,9 до 56,3%) и подвержено влиянию сезонных эффектов. Между показанием двух сравниваемых приборов установлена высоко значимая согласованность (r=0,70…0,81) и возможность прогнозирования по измерениям тестера содержания суммы хлорофилльных пигментов (Chl a+b) в листьях (R2=0,82…0,85). По результатам парного корреляционного анализа выявлено значимое соответствие рангов генотипов, оцененных по средним значениям двумя разными методами (rg=0,71…0,77). Выделено 10 лучших гибридных комбинаций и 3 родительских сорта. Наиболее перспективной в селекционном отношении можно считать гибридную комбинацию Дарья × Эгисар 29, характеризующуюся высоким значением SPAD 502 Plus и минимальным его снижением в ходе онтогенеза. Сорта Epos, Дарья и Эгисар 29 рекомендовано включать в селекционные программы в качестве родительских форм как источники высокой фотосинтетической активности. Использование тестера Spad 502 Plus позволяет с приемлемой точностью давать экспресс-оценку селекционному материалу по содержанию хлорофилльных пигментов в полевых условиях.

Биография автора

Людмила Владиславовна Волкова , Федеральный аграрный научный центр Северо-Востока имени Н. В. Рудницкого (610007, Российская Федерация, г. Киров, ул. Ленина, д. 166а)

Кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории селекции яровой пшеницы

Литература

 1. Процесс фотосинтеза и урожайность перспективных сортов озимой мягкой пшеницы при разных уровнях азотного и фосфорного питания в условиях орошения / Ф. М. Казиметова, Н. Р. Магомедов, А. А. Абдуллаев и др. // Зерновое хозяйство России. 2025. Т. 17, № 5. С. 76–82. doi: 10.31367/2079-8725-2025-100-5-76-82.

 2. Priadkina H. A. Pigments, efficiency of photosynthesis and winter wheat productivity // Plant Varieties Studying and Protection. 2018. Vol. 14. No. 1. P. 97–108. doi: 10.21498/2518-1017.14.1.2018.126524.

 3. Kendal E. Relationship between chlorophyll and other features in durum wheat (Triticum turgidum L. var. durum) using SPAD and biplot analyses // Journal Agricultural Science and Technology. 2015. Vol. 17. No. 7. P. 1873–1886.

 4. Ерошенко Ф. В., Сторчак И. Г., Чернова И. В. Оценка состояния растений методами экспресс-диагностики // Аграрный вестник Урала. 2019. № 7 (186). С. 19–25. doi: 10.32417/article_5d52af440f71b8.16701399.

 5. Щуклина О. А., Афанасьев Р.А. Применение фотометрических приборов для экспресс-диагностики азотного питания сельскохозяйственных растений в ранние фазы вегетации // Агрохимический вестник. 2022. № 2. С. 73–77. doi: 10.24412/1029-2551-2022-2-014.

 6. Калинина А. В., Лящева С. В. Состав и содержание пигментов фотосинтеза в листьях проростков озимой мягкой пшеницы // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. 2018. Т. 20. № 2 (2). С. 286–290.

 7. Волкова Л. В., Лисицын Е. М., Амунова О. С. Роль генотипа и погодно-климатических условий в формировании морфобиологических и хозяйственно ценных признаков яровой мягкой пшеницы // Таврический вестник аграрной науки. 2020. № 3 (23). С. 43–58. doi: 10.33952/2542-0720-2020-3-23-43-58.

 8. Лепехов С. Б. Методы подбора пар для скрещивания в селекции на урожайность у самоопыляющихся культур // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2017. Т. 178. № 4. С. 76–89. doi: 10.30901/2227-8834-2017-4-76-89.

 9. Лиховидова В. А., Газе В. Л., Ионова Е. В. Влияние фотосинтетического пигмента хлорофилла при различной влагообеспеченности на продуктивность растений озимой мягкой пшеницы // Аграрная наука. 2020. № 7-8. С. 86–89. doi: 10.32634/0869-8155-2020-340-7-86-89.

 10. Хлесткина Е. К. Стратегия новой «зеленой революции» в селекции пшеницы: к юбилею академика РАН Людмилы Андреевны Беспаловой // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. 2022. Т. 183. №1. С. 254–258. doi: 10.30901/2227-8834-2022-1-254-258.

 11. Lichtenthaler, H. K., Buschmann, C. Chlorophylls and Carotenoids: Measurement and Characterization by UV-VIS Spectroscopy. Current Protocols in Food Analytical Chemistry. 2001. Vol. 1. n. pag. URL: https://www.jkipit.kit.edu/molbio/download/425%20Lichtenthaler%20und%20Buschmann%202001%20Chl%20determ%20CurrProtFoodAnalChem%204-3-1.pdf (дата обращения: 02.02.2026).

 12. Доспехов Б. А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований): учебное пособие. 5-е изд., доп. и перераб. М.: Агропромиздат, 1985. 351 с.

 1. Kazimetova FM, Magomedov NR, Abdullaev AA. [The process of photosynthesis and productivity of promising varieties of winter soft wheat at different levels of nitrogen and phosphorus nutrition under irrigation]. Zernovoe khozyaystvo Rossii. 2025; Vol.17. 5. 76-82 p. doi: 10.31367/2079-8725-2025-100-5-76-82.

 2. Priadkina HA. Pigments, efficiency of photosynthesis and winter wheat productivity. Plant varieties studying and protection. 2018; Vol.14. No.1. 97-108 p. doi: 10.21498/2518-1017.14.1.2018.126524.

 3. Kendal E. Relationship between chlorophyll and other features in durum wheat (Triticum turgidum L. var. durum) using SPAD and biplot analyses. Journal Agricultural Science and Technology. 2015; Vol.17. No.7. 1873-1886 p.

 4. Eroshenko FV, Storchak IG, Chernova IV. [Assessing of plant condition using express-diagnostic methods]. Agrarnyy vestnik Urala. 2019; 7 (186). 19-25 p. doi: 10.32417/article_5d52af440f71b8.16701399.

 5. Shchuklina OA, Afanasev RA. [Application of photometric devices for express diagnostics of nitrogen nutrition of agricultural plants in the early stages of vegetation]. Agrokhimicheskiy vestnik. 2022; 2. 73-77 p. doi: 10.24412/1029-2551-2022-2-014.

 6. Kalinina AV, Lyashcheva SV. [Composition and content of photosynthetic pigments in leaves of winter soft wheat seedlings]. Izvestiya Samarskogo nauchnogo tsentra Rossiyskoy akademii nauk. 2018; Vol.20. 2(2). 286-290p.

 7. Volkova LV, Lisitsyn EM, Amunova OS. [The role of genotype and weather-climatic conditions in the formation of morphobiological and economically valuable traits of spring soft wheat]. Tavricheskiy vestnik agrarnoy nauki. 2020; 3 (23). 43-58 p. doi: 10.33952/2542-0720-2020-3-23-43-58.

 8. Lepekhov SB. [Methods for selecting parental pairs for crossing in breeding for self-pollinating crops productivity]. Trudy po prikladnoy botanike, genetike i selektsii. 2017; Vol.178. 4. 76-89 p. doi: 10.30901/2227-8834-2017-4-76-89.

 9. Likhovidova VA, Gaze VL, Ionova EV. [Influence of photosynthetic chlorophyll pigment under different moisture conditions on productivity of winter soft wheat plants]. Agrarnaya nauka. 2020; 7-8. 86-89 p. doi: 10.32634/0869-8155-2020-340-7-86-89.

 10. Khlestkina EK. [Strategy of new "green revolution" in wheat breeding: on the anniversary of Academician of the Russian Academy of Sciences Lyudmila Andreevna Bespalova]. Trudy po prikladnoy botanike, genetike i selektsii. 2022; Vol.183. 1. 254-258 p. doi: 10.30901/2227-8834-2022-1-254-258.

 11. Lichtenthaler HK, Buschmann C. Chlorophylls and carotenoids: measurement and characterization by UV-VIS spectroscopy. [Internet]. Current protocols in food analytical chemistry. 2001; Vol.1. n. pag. [cited 2026, February 2]. Available from: https://www.jkip.kit.edu/molbio/download/425%20Lichtenthaler%20und%20Buschmann%202001%20Chl%20determ%20CurrProtFoodAnalChem%204-3-1.pdf.

 12. Dospekhov BA. Metodika polevogo opyta (s osnovami statisticheskoy obrabotki rezultatov issledovaniy): uchebnoe posobie. 5-e izd., dop. i pererab. [Field experiment methodology (with fundamentals of statistical processing of research results): a tutorial, 5th edition, supplemented and revised]. Moscow: Agropromizdat. 1985; 351p.

Загрузки

Опубликован

2026-08-25

Как цитировать

Волкова , . Л. В. . (2026). ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ТЕСТЕРА SPAD 502 PLUS ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ СОДЕРЖАНИЯ ХЛОРОФИЛЛЬНЫХ ПИГМЕНТОВ В ЛИСТЬЯХ ЯРОВОЙ ПШЕНИЦЫ: УДК: 633.111:631.527:581.132 DOI: 10.31588/2073-0462-2026-21-2-22-28 EDN: CSLONA. Вестник Казанского государственного аграрного университета, 21(2). извлечено от https://vestnik-kazgau.ru/index.php/vestnik/article/view/380

Выпуск

Раздел

СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ НАУКИ

Категории