БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ПОТЕНЦИАЛ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ШТАММОВ PANTOEA BRENNERI ДЛЯ ПОВЫШЕНИЯ СОДЕРЖАНИЯ БИОДОСТУПНЫХ ФОРМ ФОСФОРА В ПОЧВЕ

DOI 10.12737/2073-0462-2025-10-16 УДК 579.64:631.46

Авторы

  • Дарья Сергеевна Бульмакова Институт фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета, Казань, Россия
  • Лидия Владиславовна Сокольникова Институт фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета, Казань, Россия
  • Алия Дамировна Сулейманова Институт фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета, Казань, Россия

Ключевые слова:

фосфатмобилизация, минерализация, солюбилизация, биопрепараты, Pantoea brenneri.

Аннотация

Исследования проводили с целью определения роли штаммов почвенных бактерий Pantoea brenneri в повышении биодоступности почвенного фосфора и оценки биотехнологического потенциала штаммов для использования в качестве биоудобрений. Почвенные микрокосмы создавали в четырех вариантах: инокулированная нестерильная почва (30 г + 5 мл суспензии P. brenneri, 1,5×108 КОЕ/мл); контроль с нестерильной почвой (30 г + 5 мл 0,9% NaCl); инокулированная стерильная почва (30 г + 5 мл суспензии P. brenneri, 1,5×108 КОЕ/мл); контроль со стерильной почвой (30 г + 5 мл 0,9% NaCl). Микрокосмы инкубировали в течение 15 суток, образцы отбирали в начале и конце инкубации. Фосфатмобилизацию штаммов P. brenneri в почве подтверждает повышение уровня экспрессии генов gdh (глюкозодегидрогеназа) и pho (фосфатаза), продукты которых участвуют в солюбилизации и минерализации труднодоступных соединений фосфора. Экспрессия целевых генов в стерильной почве была выше, чем в нестерильной, в зависимости от времени инкубации и используемого штамма: в отношении гена gdh – в среднем в 1,2…1,9 раз, гена pho – в среднем в 1,3…1,7 раз. Внесение суспензии штаммов в почву способствовало увеличению числа биодоступных форм фосфора в стерильной почве в среднем на 22…27%, в нестерильной – на 15…18%. Штаммы P. brenneri сохраняли выживаемость в почве на протяжении всего эксперимента, что характеризует их способность к конкуренции с нативной почвенной микрофлорой. На 5 сутки инкубации отмечали 6…8-кратное увеличение числа КОЕ/г почвы, по сравнению с начальной точкой (0 сутки), а на 15 сутки величина этого показателя превышала исходную величину в среднем в 3…4 раза.

Сведения об авторах

Дарья Сергеевна Бульмакова , Институт фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета, Казань, Россия

кандидат биологических наук, старший преподаватель кафедры микробиологии

Лидия Владиславовна Сокольникова , Институт фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета, Казань, Россия

лаборант научно-исследовательской лаборатории агробиоинженерии

Алия Дамировна Сулейманова , Институт фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета, Казань, Россия

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник научноисследовательской лаборатории агробиоинженерии

Литература

 1. Phosphate-solubilizing microorganisms: mechanism and their role in phosphate solubilization and uptake / P. Rawat, S. Das, D. Shankhdhar, et al. // Journal of Soil Science and Plant Nutrition. 2020. Vol. 21. P. 49–68. doi: 10.1007/s42729-020-00342-7.

 2. Timofeeva A., Galyamova M., Sedykh S. Prospects for using phosphate-solubilizing microorganisms as natural fertilizers in agriculture // Plants. 2022. Vol. 11. No. 16. Article 2119. URL: https://www.mdpi.com/2223-7747/11/16/2119 (дата обращения: 4.05.2025). doi: 10.3390/plants11162119.

 3. Roles of phosphate solubilizing microorganisms from managing soil phosphorus deficiency to mediating biogeochemical P cycle / J. Tian, F. Ge, D. Zhang, et al. // Biology. 2021. Vol. 10. No. 2. Article 158. URL: https://www.mdpi.com/2079-7737/10/2/158 (дата обращения: 4.05.2025). doi: 10.3390/biology10020158.

 4. Phosphate solubilizing microbes: Sustainable approach for managing phosphorus deficiency in agricultural soils / S. B. Sharma, R. Sayyed, M. H. Trivedi, et al. // SpringerPlus. 2013. Vol. 2. No. 1. Article 587. URL: https://link.springer.com/article/10.1186/2193-1801-2-587 (дата обращения: 4.05.2025). doi: 10.1186/2193-1801-2-587.

 5. Bhatia S., Sharma D. Biodesulfurization of dibenzothiophene, its alkylated derivatives and crude oil by a newly isolated strain Pantoea agglomerans D23W3 // Biochem. Eng. J. 2010. Vol. 50. No. 3. P. 104–109. doi: 10.1016/j.bej.2010.04.001.

 6. Walterson A. M., Stavrinides J. Pantoea: insights into a highly versatile and diverse genus within the Enterobacteriaceae // FEMS Microbiol. Rev. 2015. Vol. 39. No. 6. P. 968–984. doi: 10.1093/femsre/fuv027.

 7. Chen Q., Liu S. Identification and characterization of the phosphate-solubilizing bacterium Pantoea sp. S32 in reclamation soil in Shanxi, China // Frontiers in Microbiology. 2019. Vol. 10. Article 2171. URL: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2019.02171/full (дата обращения: 4.05.2025). doi: 10.3389/fmicb.2019.02171.

 8. Иткина Д. Л., Сулейманова А. Д., Шарипова М. Р. Pantoea brenneri AS3 и Bacillus ginsengihumi M2.11 как потенциальные агенты биоконтроля и стимуляторы роста растений // Микробиология. 2021. Т. 90. № 2. С. 204–214. doi: 10.31857/S0026365621020063.

 9. Антагонистические штаммы Pantoea brenneri как средства защиты растений / Д. С. Бульмакова, Г. И. Шагиева, Д. Л. Иткина и др. // Микология и фитопатология. 2023. Т. 57. № 5. С. 352–361. doi: 10.31857/S0026364823050033.

 10. Phosphate solubilization and plant growth promotion by Pantoea brenneri soil isolates / A. Suleimanova, D. Bulmakova, L. Sokolnikova, et al. // Microorganisms. 2023. Vol. 11. No. 5. Article 1136. URL: https://www.mdpi.com/2076-2607/11/5/1136 (дата обращения: 4.05.2025). doi: 10.3390/microorganisms11051136.

 11. The impact of the inoculation of phosphate-solubilizing bacteria Pantoea agglomerans on phosphorus availability and bacterial community dynamics of a semi-arid soil / I. Saadouli, A. Mosbah, R. Ferjani, et al. // Microorganisms. 2021.Vol. 9. No. 8. Article 1661. URL: https://www.mdpi.com/2076-2607/9/8/1661 (дата обращения: 4.05.2025). doi: 10.3390/microorganisms9081661.

 12. Novel glucose-1-phosphatase with high phytase activity and unusual metal ion activation from soil bacterium Pantoea sp. strain 3.5.1 / A. D. Suleimanova, A. Beinhauer, L. R. Valeeva, et al. // Appl. Environ. Microbiol. 2015. Vol. 81. No. 19. P. 6790–6799. doi: 10.1128/AEM.01384-15.

 13. Идентификация фитат-гидролизующих ризобактерий рода Pantoea на основе фенотипических признаков и мультилокусного анализа / А. Д. Сулейманова, Д. Л. Иткина, Д. С. Пудова и др. // Микробиология. 2021. Т. 90. № 1. С. 87–95. doi: 10.1134/S0026261721010112.

 14. Olsen S. R. Estimation of available phosphorus in soils by extraction with sodium bicarbonate. Washington, D.C.: U.S. Dept. of Agriculture, 1954. 19 p.

 15. Greiner R., Konietzny U., Jany K. D. Purification and characterization of two phytases from Escherichia coli // Arch. Biochem. Biophys. 1993. Vol. 303. No. 1. P. 107–113. doi: 10.1006/abbi.1993.1261.

 16. Strigul N. S., Kravchenko L. V. Mathematical modeling of PGPR inoculation into the rhizosphere // Environ. Model. Softw. 2006. Vol. 21. No. 8. P. 1158–1171. doi: 10.1016/j.envsoft.2005.06.003.

 17. Formulation of a highly effective inoculant for common bean based on an autochthonous elite strain of Rhizobium leguminosarum bv. phaseoli, and genomic-based insights into its agronomic performance / R. Pastor-Bueis, C. Sanchez-Cañizares, E. K. James, et al. // Frontiers in Microbiology. 2019. Vol. 10. Article 2724. URL: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2019.02724/full (дата обращения: 4.05.2025). doi: 10.3389/fmicb.2019.02724.

 18. Tina W., Walde-Meskel E., Wallet F. Symbiotic efficiency of native and exotic rhizobium strains nodulating lentil (Lens culinaris Medik.) in soils of southern Ethiopia // Agronomy. 2016. Vol. 6. No. 1. Article 11. URL: https://www.mdpi.com/2073-4395/6/1/11 (дата обращения: 4.05.2025). doi: 10.3390/agronomy6010011.

 1. Rawat P, Das S, Shankhdhar D. Phosphate-solubilizing microorganisms: mechanism and their role in phosphate solubilization and uptake. Journal of Soil Science and Plant Nutrition. 2020; Vol.21. 49-68 p. doi: 10.1007/s42729-020-00342-7.

 2. Timofeeva A, Galyamova M, Sedykh S. Prospects for using phosphate-solubilizing microorganisms as natural fertilizers in agriculture. [Internet]. Plants. 2022; Vol.11. No.16. Article 2119. [cited 2025, May 04]. Available from: https://www.mdpi.com/2223-7747/11/16/2119. doi: 10.3390/plants11162119.

 3. Tian J, Ge F, Zhang D. Roles of phosphate solubilizing microorganisms from managing soil phosphorus deficiency to mediating biogeochemical P cycle. [Internet]. Biology. 2021; Vol.10. No. 2. Article 158. [cited 2025, May 04]. Available from: https://www.mdpi.com/2079-7737/10/2/158. doi: 10.3390/biology10020158.

 4. Sharma SB, Sayyed R, Trivedi MH. Phosphate solubilizing microbes: Sustainable approach for managing phosphorus deficiency in agricultural soils. [Internet]. SpringerPlus. 2013; Vol.2. No.1. Article 587. [cited 2025, May 04]. Available from: https://link.springer.com/article/10.1186/2193-1801-2-587. doi: 10.1186/2193-1801-2-587.

 5. Bhatia S, Sharma D. Biodesulfurization of dibenzothiophene, its alkylated derivatives and crude oil by a newly isolated strain Pantoea agglomerans D23W3. Biochem. Eng. J. 2010; Vol.50. No.3. 104-109 p. doi: 10.1016/j.bej.2010.04.001.

 6. Walterson AM, Stavrinides J. Pantoea: insights into a highly versatile and diverse genus within the Enterobacteriaceae. FEMS Microbiol. Rev. 2015; Vol.39. No.6. 968-984 p. doi: 10.1093/femsre/fuv027.

 7. Chen Q, Liu S. Identification and characterization of the phosphate-solubilizing bacterium Pantoea sp. S32 in reclamation soil in Shanxi, China. [Internet]. Frontiers in Microbiology. 2019; Vol.10. Article 2171. [cited 2025, May 04]. Available from: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2019.02171/full. doi: 10.3389/fmicb.2019.02171.

 8. Itkina DL, Suleymanova AD, Sharipova MR. [Pantoea brenneri AS3 and Bacillus ginsengihumi M2.11 as potential biocontrol agents and plant growth promoters]. Mikrobiologiya. 2021; Vol.90. 2. 204-214 p. doi: 10.31857/S0026365621020063.

 9. Bulmakova DS, Shagieva GI, Itkina DL. [Antagonistic strains of Pantoea brenneri as plant protection products]. Mikologiya i fitopatologiya. 2023; Vol.57. 5. 352-361 p. doi: 10.31857/S0026364823050033.

 10. Suleymanova A, Bulmakova D, Sokolnikova L. Phosphate solubilization and plant growth promotion by Pantoea brenneri soil isolates. [Internet]. Microorganisms. 2023; Vol.11. No.5. Article 1136. [cited 2025, May 04]. Available from: https://www.mdpi.com/2076-2607/11/5/1136. doi: 10.3390/microorganisms11051136.

 11. Saadouli I, Mosbah A, Ferjani R. The impact of the inoculation of phosphate-solubilizing bacteria Pantoea agglomerans on phosphorus availability and bacterial community dynamics of a semi-arid soil. [Internet]. Microorganisms. 2021; Vol.9. No.8. Article 1661. [cited 2025, May 04]. Available from: https://www.mdpi.com/2076-2607/9/8/1661. doi: 10.3390/microorganisms9081661.

 12. Suleymanova AD, Beinhauer A, Valeeva LR. Novel glucose-1-phosphatase with high phytase activity and unusual metal ion activation from soil bacterium Pantoea sp. strain 3.5.1/t al. Appl. Environ. Microbiol. 2015; Vol.81. No.19. 6790-6799 p. doi: 10.1128/AEM.01384-15.

 13. Suleymanova AD, Itkina DL, Pudova DS. [Identification of phytate-hydrolyzing rhizobacteria of Pantoea genus based on phenotypic traits and multilocus analysis]. Mikrobiologiya. 2021; Vol.90. 1. 87-95 p. doi: 10.1134/S0026261721010112.

 14. Olsen SR. Estimation of available phosphorus in soils by extraction with sodium bicarbonate. Washington, D.C.: U.S. Dept. of Agriculture. 1954; 19 p.

 15. Greiner R, Konietzny U, Jany KD. Purification and characterization of two phytases from Escherichia coli. Arch. Biochem. Biophys. 1993; Vol.303. No.1. 107-113 p. doi: 10.1006/abbi.1993.1261.

 16. Strigul NS, Kravchenko LV. Mathematical modeling of PGPR inoculation into the rhizosphere. Environ. Model. Softw. 2006; Vol.21. No.8. 1158-1171 p. doi: 10.1016/j.envsoft.2005.06.003.

 17. Pastor-Bueis R, Sanchez-Canizares C, James EK. Formulation of a highly effective inoculant for common bean based on an autochthonous elite strain of Rhizobium leguminosarum bv. phaseoli, and genomic-based insights into its agronomic performance. [Internet]. Frontiers in Microbiology. 2019; Vol.10. Article 2724. [cited 2025, May 04]. Available from: https://www.frontiersin.org/journals/microbiology/articles/10.3389/fmicb.2019.02724/full. doi: 10.3389/fmicb.2019.02724.

 18. Tina W, Walde-Meskel E, Wallet F. Symbiotic efficiency of native and exotic rhizobium strains nodulating lentil (Lens culinaris Medik.) in soils of southern Ethiopia. [Internet]. Agronomy. 2016; Vol.6. No.1. Article 11. [cited 2025, May 04]. Available from: https://www.mdpi.com/2073-4395/6/1/11. doi: 10.3390/agronomy6010011.

Загрузки

Опубликован

2026-07-21

Как цитировать

Бульмакова , Д. С., Сокольникова , Л. В., & Сулейманова , А. Д. (2026). БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ПОТЕНЦИАЛ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ШТАММОВ PANTOEA BRENNERI ДЛЯ ПОВЫШЕНИЯ СОДЕРЖАНИЯ БИОДОСТУПНЫХ ФОРМ ФОСФОРА В ПОЧВЕ: DOI 10.12737/2073-0462-2025-10-16 УДК 579.64:631.46. Вестник Казанского государственного аграрного университета, 20(2). извлечено от http://vestnik-kazgau.ru/index.php/vestnik/article/view/77

Выпуск

Раздел

СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ НАУКИ

Категории