ВЛИЯНИЕ СЕРОЙ ГНИЛИ НА ПРОДУКТИВНОСТЬ РАСТЕНИЙ ОЗИМЫХ РАПСА И ГОРЧИЦЫ САРЕПТСКОЙ
DOI 10.12737/2073-0462-2025-20-4-63-69 УДК 633.853.483:633.853.483:632.4
Ключевые слова:
рапс озимый (Brassica napus L.), горчица сарептская озимая (Brassica juncea L.), серая гниль (Botrytis cinerea Pers.), продуктивность растений, вредоносностьАннотация
К одной из вредоносных болезней, поражающих озимые рапс и горчицу сарептскую, относится серая гниль. Цель исследований – определение влияния поражения озимых рапса и горчицы сарептской серой гнилью на снижение продуктивности растений на черноземе выщелоченном в условиях степной зоны Западного Предкавказья. Работу выполняли в 2010–2020 годы. Объектами исследования служили возбудитель болезни гриб Botrytis cinerea Pers. и сорта рапса озимого Дракон, Элвис, Лорис, горчицы сарептской – Джуна. Вредоносность серой гнили (снижение продуктивности растений) рассчитывали по степени поражения. Статистическую обработку данных проводили с использованием метода простой корреляции и t-критерия Стьюдента. Метеоусловия благоприятствовали развитию B. cinerea в посевах культур во 2 декаде июня в 2011, 2014, 2017 и 2020 годы при ГТК = 1,1…2,7 в сочетании с высокой относительной влажностью воздуха (63…77%). Средняя масса семян со стручка уменьшалась в зависимости от степени поражения растения в 1,1…3,1 раза. Корреляционная связь между средней массой семян в стручке и баллом поражения озимых рапса и горчицы сарептской болезнью сильная, прямолинейная, обратная (отрицательная). Коэффициенты простой корреляции составили соответственно -0,93 и -0,96, коэффициенты детерминации – 0,86 и 0,92. В относительном выражении вредоносность болезни на озимых рапсе и горчице сарептской в среднем составила 33,3 и 32,1%.
Литература
1. Sajeeb A., Rajendrakumar P. K. Comparative evaluation of lubricant properties of biodegradable blend of coconut and mustard oil // Journal of Cleaner Production. 2019. Vol. 240. 118255 URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0959652619331257 (дата обращения: 09.09.2025). doi: 10.1016/j.jclepro.2019.118255.
2. The eco-efficiency of rapeseed and sunflower cultivation in Italy. Joining environmental and economic assessment / M. B. Forleo, N. Palmieri, A. Suardi, et al. // Journal of Cleaner Production. 2018. Vol. 172. P. 3138–3153. doi: 10.1016/j.jclepro.2017.11.094.
3. Прахова Т. Я., Прахов В. А. Оценка продуктивности сортов масличных культур в условиях Среднего Поволжья // Вестник Рязанского ГАУ имени П. А. Костычева. 2019. No 2 (42). С. 36–41.
4. The Rapeseed Potential in Poland and Germany in the Context of Production, Legislation, and Intellectual Property Rights / E. Woźniak, E. Waszkowska, T. Zimny, et al. // Front Plant Science. 2019. Vol. 10. 1423 URL: https://www.frontiersin.org/journals/plant-science/articles/10.3389/fpls.2019.01423/full (дата обращения: 05.09.2025). doi: 10.3389/fpls.2019.01423.
5. Brassicaceae Mustards: Traditional and Agronomic Uses in Australia and New Zealand / M. Rahman, A. Khatun, L. Liu, et al. // Molecules. 2018. Vol. 23. No. 1. P. 231. URL: https://www.mdpi.com/1420-3049/23/1/231 (дата обращения: 03.09.2025). doi: 10.3390/molecules23010231.
6. Szőllősi R. Chapter 25 – Indian Mustard (Brassica juncea L.) Seeds in Health // Nuts and Seeds in Health and Disease Prevention (Second Edition). 2020. Vol. 25. P. 357–364. doi: 10.1016/B978-0-12-818553-7.00025-5.
7. Valorization of calcium phosphite waste as phosphorus fertilizer: Effects on green manure productivity and soil properties / М. Fontana, L. Bragazza, T. Guillaume, et al. // Journal of Environ Manage. 2021. Vol. 285 112061 URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0301479721001237?via%3Dihub (дата обращения: 06.09.2025). doi: 10.1016/j.jenvman.2021.112061.
8. Overexpression of Brassica napus NPR1 enhances resistance to Sclerotinia sclerotiorum in oilseed rape / Z. Wang, W.-H. Zhang, L.-Yu. Ma, et al. // Physiological and Molecular Plant Pathology. 2020. Vol. 110. 101460 URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0885576519303303?via%3Dihub (дата обращения: 02.09.2025). doi: 10.1016/j.pmpp.2020.101460.
9. Non-crop sources of Rapeseed Phyllody phytoplasma ('Candidatus Phytoplasma asteris': 16SrI-B and 16SrI-(B/L)L), and closely related strains / A. Zwolińska, K. Krawczyk, N. Borodynko-Filas, et al. // Crop Protection. 2019. Vol. 119. P. 59–68. doi: 10.1016/j.cropro.2018.11.015.
10. Gupta S., Didwania N., Singh D. Biological control of mustard blight caused by Alternaria brassicae using plant growth promoting bacteria // Current Plant Biology. 2020. Vol. 23. 100166 URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2214662820300475?via%3Dihub (дата обращения: 07.09.2025). doi: 10.1016/j.cpb.2020.100166.
11. Вредные организмы в посевах рапса и меры борьбы с ними / В. М. Лукомец, Н. М. Тишков, С. А. Семеренко и др. Краснодар. 2020. 215 с.
12. Botrytis cinerea causes flower gray mold in Gastrodia elata in China / J. Li, M. Zhang, Z. Yang, et al. // Crop Protection. 2022. Vol. 155. 105923 URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0261219422000199?via%3Dihub (дата обращения: 05.09.2025). doi: 10.1016/j.cropro.2022.105923.
13. Алексеева К. Л., Сметанина Л. Г. Серая гниль томата защищенного грунта // Защита и карантин растений. 2015. No 12. С. 38–39.
14. Antifungal activity of Bacillus mojavensis D50 against Botrytis cinerea causing postharvest gray mold of tomato / L. Zheng, X. Gu, Y. Xiao, et al. // Scientia Horticulturae. 2023. Vol. 312. 11184 Таблица 4 – Вредоносность серой гнили при поражении растений озимых рапса и горчицы сарептской, среднее за 2011, 2014, 2017, 2020 годы Культура Вредоносность болезни*, % при степени поражения растения, балл 1 2 3 Среднее Рапс озимый 10,0 22,6 67,2 33,3 Горчица сарептская озимая 8,4 25,4 62,4 32,1 *вредоносность: низкая – до 15,0%; средняя – 15,1...30,0%; высокая – 30,1% и выше. URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0304423823000171?via%3Dihub (дата обращения: 07.09.2025). doi: 10.1016/j.scienta.2023.111841.
15. Nanoformulations containing rosemary oil for gray mold control in strawberries / E. G. Ramos, A. G. Queiroz, M. B. R. Veleirinho, et al. // Scientia Horticulturae. 2024. Vol. 338. 113678 URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0304423824008318?via%3Dihub (дата обращения: 04.09.2025). doi: 10.1016/j.scienta.2024.113678.
16. Methionine represses gray mold of tomato by keeping nitric oxide at an appropriate level via ethylene synthesis and signal transduction / Q. Zhang, S. Zhang, B. Wu, et al. // Food Chemistry. 2024. Vol. 461. 140942 URL: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0308814624025925?via%3Dihub (дата обращения: 25.08.2025). doi: 10.1016/j.foodchem.2024.140942.
17. Станчук А. Э. Распространенность и вредоносность гнилей корнеплодов моркови столовой в условиях Беларуси. Овощеводство. 2019. Т. 27. С. 232–239.
18. Nellist C. F. Disease resistance in polyploid strawberry. In: T. Hytönen, J. Graham, R. Harrison (eds). The Genomes of Rosaceous Berries and Their Wild Relatives. Compendium of Plant Genomes. Cham, Switzerland: Springer International Publishing. 2018. Р.79–94. doi: 10.1007/978-3-319-76020-9_7.
19. Селянинов Г. Т. К методике сельскохозяйственной климатографии // Тр. c.-х. метеорологии. 1930. No 21 (2). С. 14–15.
20. Определитель болезней сельскохозяйственных культур / М. К. Хохряков, В. И. Потлайчук, А. Я. Семенов и др. Л.: Колос, 1984. 304 с.
21. Методы фитопатологии / З. Кирай, З. Клемент, Ф. Шоймоши и др. М.: Колос, 1974. С. 178–191.
22. Пидопличко Н. М. Грибы-паразиты культурных растений. Киев: Наукова думка, 1977. Т. 1. С. 151–153.
1. Sajeeb A, Rajendrakumar PK. Comparative evaluation of lubricant properties of biodegradable blend of coconut and mustard oil. [Internet]. Journal of Cleaner Production. 2019; Vol.240. 118255 p. [cited 2025, September 09]. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0959652619331257. doi: 10.1016/j.jclepro.2019.118255.
2. Forleo MB, Palmieri N, Suardi A. The eco-efficiency of rapeseed and sunflower cultivation in Italy. Joining environmental and economic assessment. Journal of Cleaner Production. 2018; Vol.172. 3138-3153 p. doi: 10.1016/j.jclepro.2017.11.094.
3. Prakhova TYa, Prakhov VA. [Evaluation of productivity of oilseed crop varieties in the conditions of middle Volga region]. Vestnik Ryazanskogo GAU imeni P.A. Kostycheva. 2019; 2 (42). 36-41 p.
4. Wozniak E, Waszkowska E, Zimny T. The rapeseed potential in Poland and Germany in the context of production, legislation, and intellectual property rights. [Internet]. Front Plant Science. 2019; Vol.10. 1423 p. [cited 2025, September 05]. Available from: https://www.frontiersin.org/journals/plant-science/articles/10.3389/fpls.2019.01423/full. doi: 10.3389/fpls.2019.01423.
5. Rahman M, Khatun A, Liu L. Brassicaceae mustards: traditional and agronomic uses in Australia and New Zealand. [Internet]. Molecules. 2018; Vol.23. No.1. 231 p. [cited 2025, September 03]. Available from: https://www.mdpi.com/1420-3049/23/1/231. doi: 10.3390/molecules23010231.
6. Szollosi R. Chapter 25 – Indian Mustard (Brassica juncea L.) seeds in health. Nuts and seeds in health and disease prevention (second edition). 2020; Vol.25. 357-364 p. doi: 10.1016/B978-0-12-818553-7.00025-5.
7. Fontana М, Bragazza L, Guillaume T. Valorization of calcium phosphite waste as phosphorus fertilizer: Effects on green manure productivity and soil properties. [Internet]. Journal of Environ Manage. 2021; Vol.285. 112061 p. [cited 2025, September 06]. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0301479721001237?via%3Dihub. doi: 10.1016/j.jenvman.2021.112061.
8. Wang Z, Zhang WH, Ma YuL. Overexpression of Brassica napus NPR1 enhances resistance to Sclerotinia sclerotiorum in oilseed rape. [Internet]. Physiological and Molecular Plant Pathology. 2020; Vol.110. 101460 p. [cited 2025, September 02]. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0885576519303303?via%3Dihub. doi: 10.1016/j.pmpp.2020.101460.
9. Zwolinska A, Krawczyk K, Borodynko-Filas N. Non-crop sources of rapeseed phyllody phytoplasma (Candidatus Phytoplasma asteris: 16SrI-B and 16SrI-(B/L)L) and closely related strains. Crop Protection. 2019; Vol.119. 59-68 p. doi: 10.1016/j.cropro.2018.11.015.
10. Gupta S, Didwania N, Singh D. Biological control of mustard blight caused by Alternaria brassicae using plant growth promoting bacteria. [Internet]. Current Plant Biology. 2020; Vol.23. 100166 p. [cited 2025, September 07]. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2214662820300475?via%3Dihub. doi: 10.1016/j.cpb.2020.100166.
11. Lukomets VM, Tishkov NM, Semerenko SA. Vrednye organizmy v posevakh rapsa i mery borby s nimi. [Pests in rapeseed crops and measures to control them]. Krasnodar. 2020; 215 p.
12. Li J, Zhang M, Yang Z. Botrytis cinerea causes flower gray mold in Gastrodia elata in China. [Internet]. Crop Protection. 2022; Vol.155. 105923 p. [cited 2025, September 05]. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0261219422000199?via%3Dihub. doi: 10.1016/j.cropro.2022.105923.
13. Alekseeva KL, Smetanina LG. [Gray mold of tomato in protected ground]. Zashchita i karantin rasteniy. 2015; 12. 38-39 p.
14. Zheng L, Gu X, Xiao Y. Antifungal activity of Bacillus mojavensis D50 against Botrytis cinerea causing postharvest gray mold of tomato. [Internet]. Scientia Horticulturae. 2023; Vol.312. 11184 p. [cited 2025, September 07]. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0304423823000171?via%3Dihub. doi: 10.1016/j.scienta.2023.111841.
15. Ramos EG, Queiroz AG, Veleirinho MBR. Nanoformulations containing rosemary oil for gray mold control in strawberries. [Internet]. Scientia Horticulturae. 2024; Vol.338. 113678 p. [cited 2025, September 04]. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0304423824008318?via%3Dihub. doi: 10.1016/j.scienta.2024.113678.
16. Zhang Q, Zhang S, Wu B. Methionine represses gray mold of tomato by keeping nitric oxide at an appropriate level via ethylene synthesis and signal transduction. [Internet]. Food Chemistry. 2024; Vol.461. 140942 p. [cited 2025, August 25]. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0308814624025925?via%3Dihub. doi: 10.1016/j.foodchem.2024.140942.
17. Stanchuk AE. [Prevalence and harmfulness of root rots of table carrots in Belarus]. Ovoshchevodstvo. 2019; Vol.27. 232-239 p.
18. Nellist CF. Disease resistance in polyploid strawberry. In: T. Hytönen, J. Graham, R. Harrison (eds). The genomes of rosaceous berries and their wild relatives. Compendium of plant genomes. Cham, Switzerland: Springer International Publishing. 2018; 79-94 p. doi: 10.1007/978-3-319-76020-9_7.
19. Selyaninov GT. [To the methodology of agricultural climatography]. Tr. s.-kh. meteorologii. 1930; 21 (2). 14-15 p.
20. Khokhryakov MK, Potlaychuk VI, Semenov AYa. Opredelitel bolezney selskokhozyaystvennykh kultur. [Identifier of agricultural crop diseases]. Leningrad: Kolos. 1984; 304 p.
21. Kiray Z, Klement Z, Shoymoshi F. Metody fitopatologii. [Methods of phytopathology]. Moscow: Kolos. 1974; 178-191 p.
22. Pidoplichko NM. Griby-parazity kulturnykh rasteniy. [Parasitic fungi of cultivated plants]. Kiev: Naukova dumka. 1977; Vol.1. 151-153 p.
Опубликован
Как цитировать
Выпуск
Раздел
Категории
Лицензия
Copyright (c) 2026 ВЕСТНИК Казанского государственного аграрного университета
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.
Метаданные научных статей, включая название, аннотацию, сведения об авторах, список литературы, идентификаторы и иные элементы библиографического описания для дальнейшего неограниченного использования, передаются в редакцию с правом их неограниченного использования на условиях открытой лицензии Creative Commons Attribution (CC BY).
